嘌呤霉素能筛选细胞浓度，因为嘌呤合成能力差的细胞会死掉。具体操作是先让细胞长到对数期，然后加嘌呤霉素，浓度越高死得越多。比如浓度调到1/1000正常浓度时，大概能留50%细胞活下来。浓度再调低点，比如1/10000，活细胞就更多了。这样就能根据想要的浓度，通过调整药物浓度来控制细胞数量。

为什么是这个方法呢？嘌呤霉素是抑制嘌呤合成的，细胞自己不会存嘌呤，所以刚分裂完的细胞最缺嘌呤。正常细胞2-3天分裂一代，加药后嘌呤不够的细胞24-48小时就会死。根据《细胞培养技术手册》数据，当嘌呤霉素浓度在10^-5到10^-7M时，细胞存活率在50%-80%之间。比如用1×10^-6M浓度，刚好能杀死50%细胞，剩下的就是目标浓度。但要注意细胞密度不能太高，否则死得快，可能留不下。比如原液浓度是1×10^6个/毫升，加药后要降到5×10^5个/毫升，这时候需要稀释到原来1/2浓度再补药。如果浓度太高，细胞死得快，反而测不准实际数量。比如有实验显示，浓度超过1×10^-4M时，细胞存活率不到30%，这时候可能得换更低浓度。所以关键就是先测细胞密度，再算要留多少活细胞，然后反推需要加多少嘌呤霉素。比如要留80%细胞，就选1×10^-7M浓度，这样刚好让20%死掉。但实际操作时要留有余地，比如多加一点药，因为不同细胞系对药物的敏感性不一样。比如HEK293细胞用1×10^-6M，而MCF-7细胞可能需要1×10^-7M才能留80%活细胞。所以得根据具体细胞系调整浓度，最好先做个预实验测一下。