先称量100毫克蛋白酶末，然后加到100毫升溶液里，定容到总体积100毫升。比如实验步骤里说“加-蛋白酶K溶液配制100mg”，这里的“100mg”指的是蛋白酶K的质量，不是溶液的体积。要先用天平准确称取100毫克蛋白酶K，再用缓冲液或去离子水溶解或混匀，用容量瓶调整到100毫升总量。

因为蛋白酶K是常用于DNA/RNA提取的蛋白酶，其活性单位跟浓度有关。根据《分子克隆实验指南》第4版（2006）记载，蛋白酶K常用浓度是1-10mg/mL，所以100mg蛋白酶K配成100ml溶液就是1mg/mL。实验步骤里“配制100mg”其实是说用100mg蛋白酶K配成100ml溶液，这样浓度刚好符合常规需求。比如如果写成“配成100mg溶液”就错了，因为mg是质量单位，不能直接配溶液。而“加到100毫升里”这种说法容易让人误解，正确应该是“定容至100毫升”。这些细节都跟蛋白酶K的溶解特性和实验标准有关，比如蛋白酶K在4℃下稳定，溶解时需要避免金属离子干扰。所以正确的操作流程是：称量→溶解→定容→4℃保存，每一步都要注意数据对应关系。