电镜固定液主要是让样本在显微镜下看得更清楚。先用戊二醛和甲醛的混合液浸泡样本两三天，温度控制在4度左右。泡完后要换次固定液，总共换3-4次。每次换液后要洗样本，用清水冲干净。用丙酮脱水，这样样本结构才不会散开。

为啥要这么做呢？因为固定液能抓住细胞里的蛋白质，防止样本泡烂。实验显示超过48小时固定液会导致细胞膜皱缩，泡两三天刚好固定住结构。换液3-4次能均匀覆盖样本，洗的时候冲掉多余化学物质，避免干扰电镜成像。丙酮脱水是关键步骤，脱水不足样本会吸水变软，影响切片效果。比如有人泡了5天没换液，结果样本像泡发的木耳一样软塌塌的，根本切不动。所以按这个流程走，样本成片率能到90%以上。