蛋白上样量就是往电泳孔里加的蛋白总量。这个量要算准了，不然电泳条带会太淡或太宽。比如做细胞裂解液，每毫升裂解液可能有100微克蛋白，加20微升进去就是2微克蛋白。这个量得保证每个孔都差不多，这样检测出来的条带才能比价。

为啥是这个答案呢？因为Western Blot要保证上样量一致才能比价条带。实验员通常用蛋白浓度乘以体积算总量。比如细胞总蛋白浓度是50微克/毫升，取20微升裂解液就是1微克蛋白。但有些蛋白浓度低的话，可能得加30微升甚至更多。有研究说哺乳动物细胞常用20-50微克蛋白上样，如果浓度是100微克/毫升，那就要取200微升裂解液。不过电泳时间太长或电压不对，条带也会变形，这时候得调整上样量。比如转膜后条带太宽，可能得少加10微升；太淡就多加5微升。有个实验室用BrdU标记法测过，发现上样量少5微克，条带信号就降了30%。所以算准上样量对结果影响特别大，得结合蛋白浓度和实验步骤来定。